Diluire e denaturare le librerie
Attenersi alle seguenti istruzioni per preparare le librerie per il sequenziamento.
Nei volumi è compreso il reagente in eccesso.
| 1. | Diluire le librerie a 2 nM utilizzando RSB. |
| 2. | [25B] In una nuova provetta per microcentrifuga da 1,5 ml, diluire le librerie alla concentrazione di caricamento finale desiderata utilizzando RSB. |
Il volume finale deve essere di 56 μl per pozzetto del campione.
|
Concentrazione di caricamento finale (pM) |
Libreria da 2 nM (µl) |
RSB (µl) |
|---|---|---|
|
90 |
12,6 |
43,4 |
|
100 |
14,0 |
42,0 |
|
110 |
15,4 |
40,6 |
|
120 |
16,8 |
39,2 |
|
130 |
18,2 |
37,8 |
|
140 |
19,6 |
36,4 |
|
150 |
21,0 |
35,0 |
|
160 |
22,4 |
33,6 |
|
170 |
23,8 |
32,2 |
|
180 |
25,2 |
30,8 |
| 3. | [10B, 1.5B] In una nuova provetta per microcentrifuga da 1,5 ml, diluire le librerie alla concentrazione di caricamento finale desiderata utilizzando RSB. |
Il volume finale deve essere di 34 μl per pozzetto del campione.
|
Concentrazione di caricamento finale (pM) |
Libreria da 2 nM (µl) |
RSB (µl) |
|---|---|---|
|
90 |
7,7 |
26,3 |
|
100 |
8,5 |
25,5 |
|
110 |
9,4 |
24,6 |
|
120 |
10,2 |
23,8 |
|
130 |
11,1 |
22,9 |
|
140 |
11,9 |
22,1 |
|
150 |
12,8 |
21,2 |
|
160 |
13,6 |
20,4 |
|
170 |
14,5 |
19,5 |
|
180 |
15,3 |
18,7 |
| 4. | [Opzionale] Aggiungere 1-2% di PhiX non denaturato nel modo seguente. |
Quando si aggiunge il campione di controllo PhiX, 1% è la quantità raccomandata per ottenere librerie ben bilanciate. Le librerie a bassa diversità potrebbero richiedere una quantità maggiore. Per utilizzare un campione di controllo PhiX con librerie a bassa diversità, contattare l’Assistenza tecnica Illumina per informazioni su come procedere.
| a. | Quantificazione di PhiX. |
| b. | Diluire 10 nM di PhiX a 300 pM utilizzando RSB. |
| c. | [25B] Aggiungere 1,6 μl di PhiX diluito a 56 μl di libreria non denaturata. |
| d. | [10B, 1.5B] Aggiungere 1 μl di PhiX diluito a 34 μl di libreria non denaturata. |
| 1. | [25B] Aggiungere 14 µl di 0,2 N NaOH nella provetta di librerie non denaturate e del campione di controllo PhiX opzionale. |
| 2. | [10B, 1.5B] Aggiungere 8,5 µl di 0,2 N NaOH nella provetta di librerie non denaturate e del campione di controllo PhiX opzionale. |
| 3. | Tappare e utilizzare brevemente un vortex. |
| 4. | Incubare a temperatura ambiente per 5 minuti per denaturare. |
| 5. | [25B] Aggiungere 210 μl di Pre-load Buffer per neutralizzare. |
| 6. | [10B, 1,5B] Aggiungere 127,5 μl di Pre-load Buffer per neutralizzare. |
| 7. | Tappare e utilizzare brevemente un vortex. |
| 8. | Centrifugare a 280 giri per 1 minuto. |
| 9. | Conservare le librerie in ghiaccio fino al trasferimento nella striscia (a otto) provette della libreria (consultare Caricare l’inserto Lyo e la striscia (a otto) provette della libreria). |
